Table Of Content植 物 分 类 与 资 源 学 报 ꎬ３６ ( ):
２０１４ ２ １８７~１９６
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ :
ＤＯＩ １０.７６７７/ｙｎｚｗｙｊ２０１４１３０９５
大豆种子吸胀冷害抗性与其质体膜脂不饱和度正相关
∗
禹晓梅１ꎬ２ꎬ４ꎬ 李唯奇１ꎬ３∗∗
中国科学院昆明植物研究所中国西南野生生物种质资源库 云南昆明 中国科学院大学 北京
(１ ꎬ ６５０２０１ꎻ ２ ꎬ １０００４９ꎻ
红河学院生物系 云南蒙自 玉溪中烟种子有限责任公司 云南玉溪
３. ꎬ ６６１１００ꎻ ４. ꎬ ６５３１００)
摘要: 吸胀冷害是干种子在吸胀阶段遭受低温造成不萌发的现象 结果可能造成农作物损失严重 虽然吸
ꎬ ꎮ
胀过程中细胞膜的修复是关键事件 而且细胞膜在响应水分和温度胁迫中扮演重要角色 但是种子吸胀过
ꎬ ꎬ
程中膜变化的过程 特别是膜流动性变化过程研究较少 本文比较了吸胀冷害耐受型 和敏感型
ꎬ ꎮ (ＬＸ)
两个大豆品种在吸胀冷害过程中膜脂不饱和度 的变化 结果发现
(Ｒ５) (ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘꎬ ＤＢＩ) ꎬ ꎬ ＬＸ
和 在常温 吸胀时变化趋势一致 质体膜脂 升高 质体外膜脂中磷脂酰甘油
Ｒ５ (２５℃) ꎬ ＤＢＩ ꎬ (ｐｈｏｓｐｈａｔｉ￣
分子 下降 和 在低温 吸胀时 变化有很大差异 低温吸胀仅仅延
ｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌꎬ ＰＧ) ＤＢＩ ꎮ ＬＸ Ｒ５ (４℃) ＤＢＩ ꎬ
缓了耐受型 中质体膜脂 的升高 但是敏感性 质体膜脂 不仅没有升高反而下降 用浓度
ＬＸ ＤＢＩ ꎬ Ｒ５ ＤＢＩ ꎮ
的聚乙二醇 引发没有直接引起 变化 但是所引起的细微而显著的变化
３３％ (ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌꎬＰＥＧ) ＤＢＩ ꎬ
可能为萌发做好准备 引发处理后的 在吸胀冷害后第二和第三阶段质体膜脂 迅速增加 这个
ꎮ ＰＥＧ Ｒ５ ＤＢＩ ꎬ
增加模式与 的 增加相似 结果表明 吸胀冷害延缓或者阻滞了质体膜脂不饱和度的升高 大豆种
ＬＸ ＤＢＩ ꎮ ꎬ ꎬ
子的吸胀冷害抗性与质体膜脂不饱和度正相关 提高质体膜质 可以提高吸胀冷害抗性
ꎬ ＤＢＩ ꎮ
关键词: 大豆种子 吸胀冷害 膜脂不饱和度 渗透调控 双键指数
ꎻ ꎻ ꎻ ꎻ
中图分类号: 文献标识码: 文章编号:
Ｑ９４５ Ａ ２０９５－０８４５(２０１４)０２－１８７－１０
Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ
Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ Ｓｏｙｂｅａｎ Ｓｅｅｄｓ
１ꎬ２ꎬ４ １ꎬ３∗∗
ＹＵ Ｘｉａｏ￣Ｍｅｉ ꎬ ＬＩ Ｗｅｉ￣Ｑｉ
ＧｅｒｍｐｌａｓｍＢａｎｋｏｆＷｉｌｄＳｐｅｃｉｅｓｉｎＳｏｕｔｈｗｅｓｔＣｈｉｎａ ＫｕｎｍｉｎｇＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＢｏｔａｎｙ ＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ
(１ ꎬ ꎬ ꎬＫｕｎｍｉｎｇ
ＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ ＤｅｐａｒｔｍｅｎｔｏｆＢｉｏｌｏｇｙ
６５０２０１ꎬＣｈｉｎａꎻ２ ꎬＢｅｉｊｉｎｇ１０００４９ꎬＣｈｉｎａꎻ３. ꎬ
ＨｏｎｇｈｅＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ＹｕｘｉＺｈｏｎｇｙａｎＴｏｂａｃｃｏＳｅｅｄＣｏ. Ｌｔｄ
ꎬＭｅｎｇｚｉ６６１１００ꎬＣｈｉｎａꎻ４. ꎬ ꎬＹｕｘｉ６５３１００ꎬＣｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ
: Ｉｎｊｕｒｙ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｓ ａ ｃｏｍｍｏｎ ｐｈｅｎｏｍｅｎｏｎ ｄｕｒｉｎｇ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｄｅｓｉｃｃａｔｅｄ ｓｅｅｄｓꎬ
ａｎｄ ｕｓｕａｌｌｙ ｃａｕｓｅｓ ｓｅｒｉｏｕｓｌｙｃｏｍｐｒｏｍｉｓｅｓｓｅｅｄｌｉｎｇｅｍｅｒｇｅｎｃｅａｎｄｃｒｏｐｙｉｅｌｄ. Ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎｏｆｔｈｅｃｅｌｌｍｅｍｂｒａｎｅｓｉｓａ
ｃｒｉｔｉｃａｌ ｅｖｅｎｔ ｄｕｒｉｎｇｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬｍｏｒｅｏｖｅｒｉｔｉｓｖｅｒｙｉｍｐｏｒｔａｎｔｉｎｒｅｓｐｏｎｓｅｓｔｏｗａｔｅｒａｎｄｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓｔｒｅｓｓ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ
ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓｉｎｍｅｍｂｒａｎｅｓｔｒｕｃｔｕｒｅｄｕｒｉｎｇｓｅｅｄｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬｅｓｐｅｃｉａｌｌｙｔｈｏｓｅｒｅｌａｔｅｄｔｏｍｅｍｂｒａｎｅｆｌｕｉｄｉｔｙꎬｈａｖｅｙｅｔｔｏ
ｂｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ. Ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ (ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘꎬ
ＤＢＩ) ｂｅｔｗｅｅｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｔｏｌｅｒａｎｔ ‘ＬＸ’ ａｎｄｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ‘Ｒ５’ ｓｏｙｂｅａｎｃｕｌｔｉｖａｒｓｄｕｒｉｎｇｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ａｆ￣
ｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ｎｏｒｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ (２５℃)ꎬ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｓｈｏｗｅｄ ｓｉｍｉｌａｒ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｕｎ￣
ｓａｔｕｒａｔｉｏｎꎬ ｗｉｔｈ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ｒｅｄｕｃｅｄ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ
(ＰＧ). Ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔꎬ ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｄｒａｍａｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ＤＢＩ ｂｅｔｗｅｅｎ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
ｕｎｄｅｒ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ(４℃). ＣｈｉｌｌｉｎｇｏｎｌｙｄｅｌａｙｅｄｔｈｅｉｎｃｒｅａｓｅｏｆｐｌａｓｔｉｄｉｃＤＢＩｉｎｓｅｅｄｓｏｆｔｈｅｔｏｌｅｒａｎｔｃｕｌｔｉｖａｒ
∗Ｆｕｎｄｉｎｇ:ＴｈｅＮａｔｉｏｎａｌＮａｔｕｒａｌＳｃｉｅｎｃｅＦｏｕｎｄａｔｉｏｎｏｆＣｈｉｎａ(ＮＳＦＣ３０６７０４７４ꎬ３０８７０５７１ꎬａｎｄ３１０７０２６２)
∗∗ＡｕｔｈｏｒｆｏｒｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻＥ￣ｍａｉｌ:ｗｅｉｑｉｌｉ＠ｍａｉｌｋｉｂａｃｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄｄａｔｅ: ２０１３－０４－２１ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄｄａｔｅ: ２０１３－０５－２４
作者简介 禹晓梅 女 博士 主要从事种子生物学研究
: (１９８４－) ꎬ ꎬ ꎮ
植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷
１８８ ３６
ＬＸꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｉｄ ｎｏｔ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｏｒ ｅｖｅｎ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｃｕｌｔｉｖａｒ Ｒ５ ｕｎｄｅｒ ｔｈｅｓｅ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ.
Ｐｒｉｍｉｎｇ ｏｆ ｓｅｅｄｓｂｙｉｎｃｕｂａｔｉｏｎｉｎ３３％ ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ(ＰＥＧ) ｄｉｄｎｏｔｄｉｒｅｃｔｌｙｃａｕｓｅｃｈａｎｇｅｓｉｎＤＢＩꎬｈｏｗｅｖｅｒꎬ
ｔｈｅ ｓｕｂｔｌｅ ｂｕｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｔｈａｔ ｉｔ ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｔｈｅ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｔｒａｉｎ ｆｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ
ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅｓ ＩＩ ａｎｄ ＩＩＩ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｉｎ ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ
ｓｔｒｅｓｓꎻ ｔｈｉｓ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｗａｓ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ＤＢＩ ｏｆ ＬＸ. Ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｕｇｇｅｓｔ ｔｈａｔ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
ｄｅｌａｙｓ ｏｒ ｐｒｅｖｅｎｔｓ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｔｈａｔ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｉｓ ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｌｉｐｉｄｓꎬ ａｎｄ ｔｈａｔ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｃｏｕｌｄ ｉｍｐｒｏｖｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ
: Ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓꎻ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙꎻ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓꎻ Ｏｓｍｏｃｏｎｄｉ￣
ｔｉｏｎｉｎｇꎻ Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ
Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｓ ａ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｐｒｏｃｅｓｓ ｄｕｒｉｎｇ ｓｅｅｄ ｇｅｒ￣ ｊｕｒｙ ｉｓ ａ ｃｏｍｍｏｎ ｐｒｏｂｌｅｍ ｉｎ ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ ａｎｄ ｈａｓ ｂｅｅｎ
ｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｔｈｅ ｕｐｔａｋｅ ｏｆ ｗａｔｅｒ ｂｙ ａ ｍａｔｕｒｅ ｄｒｙ ｓｅｅｄ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｆｏｒ ａ ｗｉｄｅ ｒａｎｇｅ ｏｆ ｃｒｏｐｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｇｒｅｅｎ
ｅｔ ａｌ
ｉｓ ｔｒｉｐｈａｓｉｃ (Ｂｅｗｌｅｙꎬ １９９７ꎻ Ｙｉｎ .ꎬ ２００９ꎻ Ｈａｎ ｂｅａｎ ａｎｄ ｌｉｍａ ｂｅａｎ (Ｐｏｌｌｏｃｋꎬ １９６９)ꎬ ｃｏｔｔｏｎ (Ｃｈｒｉｓ￣
ｅｔ ａｌ
.ꎬ ２０１３)ꎬ ｗｉｔｈ ｒａｐｉｄ ｉｎｉｔｉａｌ ｕｐｔａｋｅ (ｐｈａｓｅ Ｉ) ｔｉａꎬ１９６７)ꎬ ｐｅａ (Ｐｏｗｅｌｌ ａｎｄ Ｍａｔｔｈｅｗｓꎬ １９７８)ꎬ ｃｕ￣
ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ａ ｐｌａｔｅａｕ ｐｈａｓｅ (ｐｈａｓｅ ＩＩ). Ａ ｆｕｒｔｈｅｒ ｃｕｍｂｅｒ (Ｗｉｌｌｉｎｇ ａｎｄ Ｌｅｏｐｏｌｄꎬ １９８３)ꎬ ｃｏｒｎ ａｎｄ ｓｏｙ￣
ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｗａｔｅｒ ｕｐｔａｋｅ ｏｃｃｕｒｓ ｏｎｌｙ ａｆｔｅｒ ｇｅｒｍｉｎａ￣ ｂｅａｎ (Ｏｂｅｎｄｏｒｆ ａｎｄ Ｈｏｂｂｓꎬ １９７０). Ｏｎ ｏｎｅ ｏｃｃａｓｉｏｎꎬ
ｔｉｏｎ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｃｏｍｐｌｅｔｅｄꎬ ａｓ ｔｈｅ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ａｘｅｓ ｅ￣ ａ ２５％ ｄｅｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｙｉｅｌｄ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ￣
ｌｏｎｇａｔｅ (ｐｈａｓｅ ＩＩＩ). Ｉｎ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓꎬ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｊｕｒｙ ｗａｓ ｒｅｐｏｒｔｅｄꎬ ｅｖｅｎ ｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ ｆｉｅｌｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｅｎ￣
ｓｙｓｔｅｍｓ ｌｏｓｅ ｔｈｅｉｒ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ａｄｏｐｔ ａ ｗｒｉｎｋｌｅｄ ａｎｄ ｓｉｔｙ ｒｅｍａｉｎｅｄ ｔｈｅ ｓａｍｅ (Ｈｏｂｂｓ ａｎｄ Ｏｂｅｎｄｏｒｆꎬ１９７２).
ｄｉｓｏｒｄｅｒｅｄ ｆｏｒｍꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｔｈｅ ｈｅｘａｇｏｎａｌ ＩＩ ｏｒ ｃｒｙｓｔａｌ￣ Ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ ｉｎｖｏｌｖｅｓ ｔｈｅ ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ ｏｆ
ｌｉｎｅ ｇｅｌ ｆｏｒｍｓ. Ｕｐｏｎ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅｓｅ ｓｙｓｔｅｍｓ ｒｅ￣ ｓｅｅｄｓ ｉｎ ａｎ ｏｓｍｏｔｉｃｕｍꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｕｓｕａｌｌｙ ａ ｓｏｌｕｔｉｏｎ
ｐａｉｒ ｔｈｅｍｓｅｌｖｅｓ ｉｎｔｏ ａｎ ｏｒｄｅｒｌｙ ａｎｄ ｓｔａｂｌｅ ｃｏｎｆｉｇｕｒａ￣ ｏｆ ａ ｓａｌｔ ｏｒ ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ (ＰＥＧ). Ｐｒｉｍｉｎｇ
ｔｉｏｎꎬ ｗｈｉｃｈ ｒｅｓｔｏｒｅｓ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ｆｌｕｉｄｉｔｙ (Ｚｈｅｎｇꎬ ｓｅｅｄｓ ｆｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｂｙ ｉｎｃｕｂａｔｉｎｇ ｔｈｅｍ ｉｎ ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ
１９９１). Ｔｈｅ ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｏｃｃｕｒｓ ｏｆ ＰＥＧ ｗａｓ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｓｈｏｗｎ ｔｏ ｒｅｄｕｃｅ ｏｒ ｅｌｉｍｉｎａｔｅ
ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｐｈａｓｅ ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ ｔｈｅ ｐｈｙｓｉｃａｌ ｕｐｔａｋｅ ｏｆ ｄａｍａｇｅ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｉｔ ａｌｓｏ
ｗａｔｅｒ (ｐｈａｓｅ Ｉ)ꎬ ａｎｄ ｉｔ ｉｓ ｖｅｒｙ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｆｏｒ ｓｅｅｄ ｃｌｅａｒｌｙ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｓｅｅｄ ｖｉｇｏｕｒ (Ｗｏｏｄｓｔｏｃｋ ａｎｄ Ｔａｏꎬ
ｅｔ ａｌ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ (Ｂｅｗｌｅｙꎬ １９９７). Ｉｔ ｉｓ ｇｅｎｅｒａｌｌｙ ｒｅｃｏｇ￣ １９８１ꎻ Ｐｏｓｍｙｋ .ꎬ ２００１). Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ａｎｄ
ｎｉｓｅｄ ｔｈａｔ ｉｎｊｕｒｙ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｏｃ￣ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ ａｒｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｖａｒｉｏｕｓ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ
ｃｕｒｓ ｗｈｅｎ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅ ａｔ ａ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｔ ａｎｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ. Ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓꎬ
ｔｈｉｓ ｓｔａｇｅ (Ｚｈｅｎｇꎬ １９８８ꎬ １９９１). Ｔｈｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｔｈｅ ｇｒｅａｔｅｓｔ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ｏｃｃｕｒｓ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ｒａｔｅ ａｒｅ ｔｈｅ ｔｗｏ ｍａｉｎ ｆａｃｔｏｒｓ ｔｈａｔ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｈｏｕｒｓ ｏｆ ｔｈｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｐｈａｓｅ (Ｐｏｌ￣
ｅｔ
ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｓｕｃｃｅｓｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｒｅｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ ｌｏｃｋ ａｎｄ Ｔｏｏｌｅꎬ １９６６ꎻ Ｃｈｒｉｓｔｉａꎬ １９６７ꎻ Ｂｒａｍｌａｇｅ
ｅｔ ａｌ ａｌ
(Ｙｉｎ .ꎬ ２００９ꎻ Ｌｙｏｎｓꎬ １９７３). Ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ .ꎬ １９７８ꎻ Ｌｅｏｐｏｌｄꎬ １９８０). Ｔｈｅ ｌｅａｋａｇｅ ｏｆ ｓｏｌｕｔｅｓ
ａｎｄ ｒａｐｉｄ ｕｐｔａｋｅ ｏｆ ｗａｔｅｒ ｃａｎ ｓｅｖｅｒｅｌｙ ｄｉｓｔｕｒｂ ｐｈｏｓ￣ ｆｒｏｍ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｎｇ ｓｅｅｄｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｐｈｏｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ｉｎｄｕｃｅ ａ ｃｈａｎｇｅ ｉｎ ｔｈｅｉｒ ａｒｒａｎｇｅｍｅｎｔ ｒｅｏｒｇａｎｉｓａｔｉｏｎ ｉｓ ｉｍｐａｉｒｅｄ ａｔ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ (Ｂｒａｍ￣
ｅｔ ａｌ
ｆｒｏｍ ａ ｈｅｘａｇｏｎａｌ (ｄｅｈｙｄｒａｔｅｄ) ｔｏ ａ ｌａｍｅｌｌａｒ (ｈｙ￣ ｌａｇｅ .ꎬ １９７８)ꎬ ａｎｄ ｔｈｕｓ ｔｈａｔ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｓｙｓｔｅｍｓ
ｄｒａｔｅｄ) ａｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅ (Ｓｉｍｏｎꎬ １９７４). ａｒｅ ｔｈｅ ｃｅｌｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｍｏｓｔ ｖｕｌｎｅｒａｂｌｅ ｔｏ
Ｓｅｖｅｒｅ ｉｎｊｕｒｙ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｏｃ￣ ｉｎｊｕｒｙ ｂｙ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎻ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｏｎｌｙ ａ ｌｉｍｉｔｅｄ ｎｕｍｂｅｒ
ｃｕｒｓ ｗｈｅｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ａｂｓｏｒｂ ｗａｔｅｒ ａｔ ａ ｏｆ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ａｄｄｒｅｓｓｅｄ ｔｈｉｓ ｉｓｓｕｅ.
ｌｏｗｅｒ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ.Ｔｈｉｓｒｅｓｕｌｔｓｉｎｐｏｏｒｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬｒｅ￣ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓꎬ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ ｐｌａｓｍａ ａｎｄ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ
ｄｕｃｅｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅꎬ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｖｉｇｏｕｒꎬ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ａｒｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｔｏ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｓｔｉｍｕｌｉ. Ｔｈｅ
ａｎｄ ｕｌｔｉｍａｔｅｌｙ ｌｏｓｓ ｏｆ ｙｉｅｌｄ (Ｐｏｌｌｏｃｋꎬ１９６９). Ｓｕｃｈ ｉｎ￣ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｏｆ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｃａｎ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｔｈｅｉｒ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ
期 ｅｔ ａｌ
２ ＹＵ ａｎｄ ＬＩ .: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ １８ ９
ｄｕｒｉｎｇ ｅｘｐｏｓｕｒｅ ｔｏ ｓｔｒｅｓｓꎬ ｉｔ ｃａｎ ｂｅ ｏｐｔｉｍｉｓｅｄ ｂｙ ａｄ￣ ｔｈｕｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｉｎ ｆｏｕｒ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｒｅ￣
ｊｕｓｔｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄ ｏｒ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄ ｃｏｍｐｏｓｉ￣ ｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｆｒｅｑｕｅｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ.
ｔｉｏｎꎬ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅꎬ ａｎｄ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ Ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｍｏｓｔ ｓｏｙｂｅａｎ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ ａｒｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｔｏ
ｔｏ ｓｔｒｅｓｓꎬ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ａ￣ ｃｏｌｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ａｌｂｅｉｔ ｔｏ ｖａｒｉｏｕｓ ｅｘｔｅｎｔｓ. Ａｌｌｅｖｉａｔｉｏｎ
ｅｔ ａｌ
ｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ａｄａｐｔ ｔｏ ｓｔｒｅｓｓ (Ｎａｖａｒｉ￣Ｉｚｚｏ .ꎬ １９９３). ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｐｏｓｅｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ
Ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄｓ ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ ｔｏ ｒｅｌｉａｂｌｅ ａｎｄ ｓｕｓｔａｉｎａｂｌｅ ｓｏｙｂｅａｎ ｐｒｏ￣
(ｍｅａｓｕｒｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘꎬ ＤＢＩ) ｉｓ ｔｈｅ ｄｕｃｔｉｏｎ ｉｎ Ｎｏｒｔｈｅａｓｔ Ｃｈｉｎａ (Ｚｈｅｎｇꎬ １９９１). Ｗｅ ｆｏｕｎｄ
ｍａｊｏｒ ｆａｃｔｏｒ ｔｈａｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｓ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ. Ａ ｔｗｏ ｓｏｙｂｅａｎ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｅｄ ｂｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｖｅｌｓ
ｈｉｇｈ ＤＢＩ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ ｍｏｒｅ ｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ: ‘ＬＸ’ (ｃｈｉｌｌ￣
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ. Ａｔ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓꎬ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｉｎｇ￣ｔｏｌｅｒａｎｔ) ａｎｄ ‘Ｒ５’ (ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ). Ｔｈｅ ｐｕｒ￣
ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｓ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ. Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｌｅａｖｅｓ ｔｏ ｄｅｈｙ￣ ｐｏｓｅ ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｗａｓ ｔｏ ｕｓｅ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｔｏ ｄｅ￣
ｄｒａｔｉｏｎ ｏｒ ｄｅｓｉｃｃａｔｉｏｎ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａ ｄｅｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｅｒｍｉｎｅ: (ｉ) ｈｏｗ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅｓｅ ｔｗｏ ｓｏｙｂｅａｎ
ｆａｔｔｙ ａｃｉｄ ｃｏｎｔｅｎｔ ａｎｄ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅｉｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ｎｏｒｍａｌ ａｎｄ ｃｏｌｄ
ｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ ａｎｄ ｓａｔｕｒａｔｅｄ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｎ ｖａｒｉｏｕｓ ｐｌａｎｔ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓꎻ (ｉｉ) ｈｏｗ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｄｕｒｉｎｇ ＰＥＧ
ｅｔ ａｌ
ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｘｕ .ꎬ ２０１１). Ｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｒｅｄｕｃｅｓ ｔｈｅ ｐｒｉｍｉｎｇ ａｎｄ ｈｏｗ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＰＥＧ￣ｐｒｉｍｅｄ ｃｈｉｌｌ￣
ＤＢＩ ｏｆ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｎ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｏｆ ｌｅａｖ￣ ｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ｓｕｂｓｅｑｕｅｎｔｌｙ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ｃｏｌｄ
ｅｔ ａｌ
ｅｓ (Ｑｕａｒｔａｃｃｉ .ꎬ ２００２). Ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｄｅｈｙｄｒａｔｉｖｅ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓꎻ ａｎｄ (ｉｉｉ) ｗｈｅｔｈｅｒ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｉｓ
ｓｔｒｅｓｓꎬ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ｆｏｕｒ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａ ｃｈａｎｇｅ ｉｎ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ.
Ｖｉｔｉｓ ｖｉｎｉｆｅｒａ
ｏｆ ｇｒａｐｅｖｉｎｅ ( Ｌ.) ｔｈａｔ ｅｘｈｉｂｉｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
１ Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ ｍａｔｅｒｉａｌｓ
ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｄｒｏｕｇｈｔ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｉｍｐｌｉｅｄ ｔｈａｔ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｄ￣
１１ Ｓｅｅｄｓ
ｊｕｓｔｍｅｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｄｕｒｉｎｇ
ｅｔ
ｓｔｒｅｓｓ ｃｏｕｌｄ ｃｏｍｐｒｏｍｉｓｅ ｓｔｒｅｓｓ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ (Ｔｏｕｍｉ Ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓꎬ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ꎬ
ａｌ
.ꎬ ２００８ ). Ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｃｈａｎｇｅ ＤＢＩ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ａ ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ ｓｏｕｒｃｅ. Ｔｈｅ ｓｅｅｄｓ
ｍａｉｎｔａｉｎ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｄｕｒｉｎｇ ｐｅｒｉ￣ ｗｅｒｅ ｅｑｕｉｌｉｂｒａｔｅｄ ｔｏ １０％ ｍｏｉｓｔｕｒｅ ｏｖｅｒ ａ ｓａｔｕｒａｔｅｄ
ｏｄｓ ｏｆ ｓｔｒｅｓｓ ｉｓ ｏｆ ｍａｊｏｒ ｉｍｐｏｒｔａｎｃｅ ｆｏｒ ｐｌａｎｔ ｓｕｒｖｉｖ￣ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ＬｉＣｌ (５３％ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｈｕｍｉｄｉｔｙ) ｆｏｒ ｏｎｅ
ａｌꎬ ａｓ ｄｉｓｃｕｓｓｅｄ ａｂｏｖｅꎬ ａｎｄ ｍａｙ ａｌｓｏ ｂｅ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｆｏｒ ｗｅｅｋ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｓｔｏｒｅｄ ａｔ １５℃ ｕｎｔｉｌ ａｎａｌｙｓｉｓ.
ｅｔ ａｌ １２ Ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｓｅｅｄ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｏｒ ｒｅｇｒｏｗｔｈ (Ｑｕａｒｔａｃｃｉ .ꎬ
ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ
１９９５ꎻ Ｂｅｔｔａｉｅｂ .ꎬ ２００９ꎻ Ｔｏｕｍｉ .ꎬ ２００８).
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌ￣ Ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｗｅｒｅ ｔｅｓｔｅｄ ｆｏｒ ｓｅｎｓｉ￣
ｉｎｇ ａｎｄ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａ￣ ｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｔｈｅｙ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉ￣
ｔｉｏｎ ｄｏ ｎｏｔ ａｐｐｅａｒ ｔｏ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ. ｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ２４ ｈ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｔ ２５ ℃ ｏｒ ４ ℃ꎬ
Ｐｌａｎｔ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ ｉ￣ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｔｈｅｎ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｔｏ ２５℃ ｆｏｒ ｆｏｕｒ ｄａｙｓ ｄｕｒ￣
ｏｎｉｚａｔｉｏｎ ｔａｎｄｅｍｍａｓｓｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ (ＥＳＩ￣ＭＳ/ＭＳ) ｃａｎ ｉｎｇ ｗｈｉｃｈ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｗａｓ ｒｅｃｏｒｄｅｄ ｕｓｉｎｇ ａ
ｒａｐｉｄｌｙ ｍｅａｓｕｒｅ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｖｅ ａｂｕｎｄａｎｃｅｓ ｏｆ ｈｕｎｄｒｅｄｓ ｏｆ ｃａｍｅｒａ. Ｐｅｒｃｅｎｔ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｗａｓ ｍｅａｓｕｒｅｄ ｔｏ ｄｅｔｅｒ￣
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｙｐｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ｉｎ ｖｉｖｏ ｕｓｉｎｇ ｓｍａｌｌ ｍｉｎｅ ｔｈｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎬ ｆｏｕｒ
ｅｔ ａｌ
ｓａｍｐｌｅｓ (Ｗｅｌｔｉ .ꎬ ２００２)ꎬ ｔｈｉｓ ｅｎａｂｌｅｓ ａｃｃｕｒａｔｅ ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ４０ ｓｅｅｄｓ ｅａｃｈ ｗｅｒｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｅｄ ａｔ
ｃａｌｃｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ａｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄｓ ２５℃ (ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａ).
１３ Ｓｅｅｄ ｐｒｉｍｉｎｇ
ｍｅａｓｕｒｅｄ. Ｓｅｖｅｒａｌ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｅｍｐｌｏｙｅｄ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ｔｏ
ｐｒｏｆｉｌｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ Ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ３３％ ＰＥＧ￣
ｅｔ ａｌ
ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｓｔｒｅｓｓ. Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ Ｚｈｅｎｇ . ６０００ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｆｏｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ａｔ １５ ℃. Ａｎｄ ｔｈｅｎ ｔｈｅ
(２０１１) ｕｓｅｄ ａ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ａｐｐｒｏａｃｈ ｔｏ ｐｒｏｆｉｌｅ ｔｈｅ ｃｈａｎ￣ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｗａｓｈｅｄ ｔｈｒｅｅ ｔｉｍｅｓ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｎｄ
ｇｅｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄｓａｎｄ ｔｈｅｎ ｄｅｓｉｃｃａｔｅｄ ｆｏｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ａｔ ｒｏｏｍ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｔｏ
植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷
１９０ ３６
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ ａｎｄ ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
ａｄｊｕｓｔ ｔｈｅｉｒ ｗａｔｅｒ ｃｏｎｔｅｎｔ ｔｏ １０３％ ｏｎ ａｖｅｒａｇｅ (ｄｒｙ
２１ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｄｉｆｆｅｒ ｍａｒｋｅｄｌｙ ｉｎ ｔｈｅｉｒ
ｗｅｉｇｈｔ ｂａｓｉｓ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈａｔ ｏｆ ｃｏｎｔｒｏｌ ｕｎ￣
ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ
ｔｒｅａｔｅｄ ｓｅｅｄｓ. Ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｅｅｄｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｐｒｉｍｅｄ
ｓｅｅｄｓ ｔｈｅｎ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｆｏｒ ２４ ｈ ｆｏｒ Ａｆｔｅｒ ２４ｈ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５℃ꎬ ｂｏｔｈ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ. Ｕｎｔｒｅａｔｅｄ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ａ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｏｆ １００％ (Ｆｉｇ１ꎬ
ｕｓｅｄ ａｓ ｃｏｎｔｒｏｌｓ. Ｃｏｎｔｒｏｌ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ａｎ ｅｘｔｒｅｍｅｌｙ ｈｉｇｈ
１４ Ｌｉｐｉｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ａｎｄ ＥＳＩ/ＭＳ￣ＭＳ ａｎａｌｙｓｉｓ
ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｖｉａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｓｅｅｄｓ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ＬＸ ａｎｄ
Ｔｈｅ ｐｒｏｃｅｓｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎꎬ ＥＳＩ￣ＭＳ/ＭＳ ａ￣ Ｒ５ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｃｏｎｔｒａｓｔｉｎｇ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉ￣
ｎａｌｙｓｉｓꎬ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｄｅ￣ ｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ (Ｆｉｇ１ꎬ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ Ｃｈｉｌｌｉｎｇ): (１)
ｅｔ
ｓｃｒｉｂｅｄ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｗｉｔｈ ｍｉｎｏｒ ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ (Ｗｅｌｔｉ Ｒ５ꎬ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ: Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４℃ ｃａｕｓｅｄ ｌａｒｇｅ
ａｌ ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
.ꎬ ２００２ꎻ Ｌｉ .ꎬ ２００８ꎻ Ｚｈｅｎｇ .ꎬ ２０１２). ｒｅｄｕｃｔｉｏｎｓ ｉｎ ｓｕｒｖｉｖａｌ ａｎｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｖｉｇｏｕｒꎬ ａｎｄ ｎｏ
Ｅａｃｈ ｓａｍｐｌｅ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｓｅｅｄ ａｘｅｓ ｗｉｔｈ ａ ｐｏｏｌｅｄ ｄｒｙ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｃｃｕｒｒｅｄ (０ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｒａｔｅꎬ ｕｎｐｕｌ￣
ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ１０ ｔｏ ２０ｍｇꎻ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｉｓｈｅｄ ｄａｔａ). Ｔｈｅ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｓｕｒｒｏｕｎｄｅｄ ｂｙ ａ ｃｉｒｃｌｅ
ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｔｉｍｅ. Ｔｏ ｉｎｈｉｂｉｔ ｌｉｐｏｌｙｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｙꎬ ｏｆ ａ ｌｉｇｈｔ￣ｙｅｌｌｏｗꎬ ｓｔｉｃｋｙ ｓｕｂｓｔａｎｃｅꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｙ ｈａｖｅ
ｓｅｅｄ ａｘｅｓ ｗｅｒｅ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｉｍｍｅｄｉａｔｅｌｙ ｉｎｔｏ ３ ｍＬ ｏｆ ｂｅｅｎ ｍｉｌｄｅｗ ｏｒ ｆｕｎｇａｌ ｒｏｔ. (２) ＬＸꎬ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｒｅｓｉｓｔ￣
ｉｓｏｐｒｏｐａｎｏｌ ｗｉｔｈ ００１％ ｂｕｔｙｌａｔｅｄ ｈｙｄｒｏｘｙｔｏｌｕｅｎｅ ｉｎ ａｎｔ: Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｈａｄ ａ ｓｍａｌｌ ｅｆｆｅｃｔꎻ ａ ｓｍａｌｌ
ａ ７５ ℃ ｗａｔｅｒ ｂａｔｈ. Ｔｈｅ ｔｉｓｓｕｅ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｔｈｒｅｅ ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｒａｄｉｃｌｅ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅ ｗａｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｃｏｍ￣
ｔｉｍｅｓ ｗｉｔｈ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ/ｍｅｔｈａｎｏｌ (２∶１) ｗｉｔｈ ００１％ ｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ (ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａ)ꎬ ｂｕｔ ｎｏｒ￣
ｂｕｔｙｌａｔｅｄ ｈｙｄｒｏｘｙｔｏｌｕｅｎｅꎬ ｗｉｔｈ ａ ｗｅｅｋ ｏｆ ａｇｉｔａｔｉｏｎ. ｍａｌ ｒａｄｉｃｌｅ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｏｃｃｕｒｒｅｄ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｗｅ ｕｓｅｄ
Ｔｈｅ ｒｅｍａｉｎｉｎｇ ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｗａｓ ｄｒｉｅｄ ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ ａｔ ＬＸ ａｓ ａ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｃｕｌｔｉｖａｒ ａｎｄ Ｒ５ ａｓ ａ ｃｈｉｌｌ￣
１０５℃ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｅｄ ｔｏ ｇｉｖｅ ｔｈｅ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ｔｈｅ ｔｉｓ￣ ｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｏｎｅ ｆｏｒ ｆｕｒｔｈｅｒ ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ
ｓｕｅ. Ｌｉｐｉｄ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｓｅｄ ｏｎ ａ ｔｒｉｐｌｅ ｑｕａｄｒｕ￣ ｏｆ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｏｎ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ.
ｐｏｌｅ ＭＳ/ＭＳ ｅｑｕｉｐｐｅｄ ｆｏｒ ＥＳＩ. Ａｕｔｏｍａｔｅｄ ＥＳＩ￣ＭＳ/
ＭＳ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｋａｎｓａｓ Ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ
Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ａｓ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ
ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ (Ｋａｎｓａｓ Ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒꎬ ｈｔ￣
ｔｐ: / /ｗｗｗｋ￣ｓｔａｔｅｅｄｕ/ｌｉｐｉｄ/ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ).
１５ Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｄａｔａ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ
ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ (Ｄｅｖａｉａｈ .ꎬ２００６ꎻ Ｗｅｌｔｉ .ꎬ２００２ꎻ
ｅｔ ａｌ
Ｚｈｅｎｇ .ꎬ ２０１２). ＤＢＩ ｗｅｒｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ
ｆｏｒｍｕｌａ: ＤＢＩ＝[∑(Ｎ×ｍｏｌ％ ｌｉｐｉｄ)]/１００ꎬ ｗｈｅｒｅ Ｎ
ｉｓ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｄｏｕｂｌｅ ｂｏｎｄｓ ｉｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｆａｔｔｙ
ｅｔ
ａｃｉｄ ｃｈａｉｎｓ ｏｆ ｅａｃｈ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅ (Ｚｈｅｎｇ
ａｌ ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
Ｆｉｇ１ Ｔｈｅｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙｏｆｓｏｙｂｅａｎｃｕｌｔｉｖａｒｓｔｏｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌｃｈｉｌｌｉｎｇｉｎｊｕｒｙ
.ꎬ ２０１１ꎻ Ｏｓｍｏｎｄ .ꎬ １９８２ꎻ Ｒａｗｙｌｅｒ .ꎬ
ｅｔ ａｌ Ｃｏｎｔｒｏｌ:Ｓｅｅｄｓｕｎｄｅｒｗｅｎｔｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎｆｏｒ２４ｈｉｎｄｉｓｔｉｌｌｅｄｗａｔｅｒａｔ２５℃ꎬ
１９９９ꎻ Ｂａｋｈｔ .ꎬ ２００６). Ｆｉｖｅ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ ｏｆ ｅａｃｈ
ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｆｏｕｒ ｄａｙｓ ａｔ ２５ ℃. Ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ:
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｓｅｄ. Ｔｈｅ Ｑ￣ｔｅｓｔ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｏｎ
Ｓｅｅｄｓｕｎｄｅｒｗｅｎｔｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎｆｏｒ２４ｈｉｎｄｉｓｔｉｌｌｅｄｗａｔｅｒａｔ４℃ꎬｆｏｌｌｏｗｅｄ
ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ａｍｏｕｎｔ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｉｎ ｅａｃｈ ｃｌａｓｓꎬ ａｎｄ ｄａｔａ ｆｒｏｍ ｂｙｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｆｏｒｆｏｕｒｄａｙｓａｔ２５℃. ＬＸꎬＬｉａｏｘｉｎꎻＲ５ꎬＲｉｂｅｎ５
ｄｉｓｃｏｒｄａｎｔ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｒｅｍｏｖｅｄ. Ｔｈｅ ｄａｔａ ｗｅｒｅ ｓｕｂ￣
２２ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＰＥＧｐｒｉｍｉｎｇ ｏｎ Ｒ５ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
ｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ｏｎｅ￣ｗａｙ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｖａｒｉａｎｃｅ (ＡＮＯＶＡ)
ｗｉｔｈ ＳＰＳＳ １３０. Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｗａｓ ｔｅｓｔｅｄ ｂｙ Ｍａｎｙ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｏｓｍｏｐｒｉｍｉｎｇ
Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ ｌｅａｓｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ (ＬＳＤ) ｍｅｔｈｏｄ. ｃａｎ ａｃｃｅｌｅｒａｔｅ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｄｅｔｅｒ￣
期 ｅｔ ａｌ
２ ＹＵ ａｎｄ ＬＩ .: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ １９ １
ｍｉｎｅ ｗｈｅｔｈｅｒ ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｐｈａｓｅｓ Ｉ＋ＩＩ ａｎｄ ｗａｓ ｊｕｓｔ ｓｔａｒｔｉｎｇ ｐｈａｓｅ ＩＩＩ (ｕｎｐｕｌ￣
ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅꎬ ｔｈｅｙ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｉｓｈｅｄ ｄａｔａ). Ｕｓｉｎｇ ａ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ａｐｐｒｏａｃｈ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
ｆｏｒ ２４ｈ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｔｈｅｎ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｔｏ ２５℃. Ｆｉｇｕｒｅ ２ ＥＳＩ￣ＭＳ/ＭＳ (Ｗｅｌｔｉ .ꎬ ２００２ꎻ Ｌｉ .ꎬ ２００８)ꎬ
ｓｈｏｗｓ ｔｈａｔ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｅｅｄｓ ｌｏｓｔ ｔｈｅｉｒ ａｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｇｅｒｍｉ￣ ｗｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｆｉｅｄ ｓｉｘ ｈｅａｄ￣ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓｅｓ
ｎａｔｅ ａｔ ２５℃ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ: ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ (ＰＣ)ꎬ ｐｈｏｓ￣
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｔ ｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ (ＰＥ)ꎬｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌ (ＰＩ)ꎬ
２５℃ ｗａｓ ａｌｍｏｓｔ ｕｎｃｈａｎｇｅｄ ａｆｔｅｒ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｓｅｒｉｎｅ (ＰＳ)ꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ (ＰＡ)ꎬ
(ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａ). Ｔｈｉｓ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ (ＰＧ)ꎬ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ｔｗｏ ｈｅａｄ￣
ＰＥＧ ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ ｈａｓ ｃｌｅａｒ ａｄｖａｎｔａｇｅｓ ｆｏｒ ｉｍ￣ ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｇａｌａｃｔｏｌｉｐｉｄｓ: ｍｏｎｏｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌ￣
ｐｒｏｖｉｎｇ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｇｌｙｃｅｒｏｌ (ＭＧＤＧ) ａｎｄ ｄｉｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ (ＤＧ￣
ｅｔ ａｌ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ＰＥＧ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ ＤＧ) (Ｗｅｌｔｉ .ꎬ ２００２)ꎬ ａｎｄ ｔｈｕｓ ｗｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ
ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｏｆ ｉｎｊｕｒｙ ｄｕｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ ｔｈｅｉｒ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｐｈａｓｅｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ. (Ｔａｂｌｅ １). Ｆｒｏｍ ａｎ ｏｖｅｒｖｉｅｗ ｏｆ ｔｈｅ ＤＢＩꎬ ｉｔ ｃａｎ ｂｅ
ｓｅｅｎ ｔｈａｔ ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ
ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｅｉｇｈｔ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ ｎｏｒｍａｌ ａｎｄ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｃｅｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ＰＥＧ￣ ａｎｄ ｎｏｎ￣ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ
ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ. Ｄｅｔａｉｌｅｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ
ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ ａｒｅ ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｉｎ ｌａｔｅｒ ｓｅｃｔｉｏｎｓ.
２４ Ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｉｆｆｅｒ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５℃
Ｔｏ ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄ ｂｅｔｔｅｒ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅ
Ｆｉｇ２ ＰｒｉｏｒｉｍｉｂｉｂｉｔｉｏｎｉｎｓｏｌｕｔｉｏｎｓｏｆＰＥＧｐｒｏｔｅｃｔｓａｇａｉｎｓｔ
ｃｈｉｌｌｉｎｇｉｎｊｕｒｙｉｎｇｅｒｍｉｎａｔｉｎｇＲ５ｓｏｙｂｅａｎｓｅｅｄｓ ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ｗｅ ｐｒｏｆｉｌｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｐｈａｓｅ ｂｙ
Ｃｏｎｔｒｏｌｓ:Ｒ５ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈｏｕｔ ＰＥＧ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ｐｈａｓｅ ｆｒｏｍ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｉｎ
２４ｈｉｎｄｉｓｔｉｌｌｅｄｗａｔｅｒａｔ４℃ꎬｆｏｌｌｏｗｅｄｂｙｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｆｏｒｆｏｕｒｄａｙｓａｔ
ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｎｏｒｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
２５℃.ＡｆｔｅｒＰＥＧｔｒｅａｔｍｅｎｔ:ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄＲ５ｓｅｅｄｓｕｎｄｅｒｗｅｎｔｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｅｓｔｅｄ (２５ ℃). Ｔａｂｌｅ １ ｓｈｏｗｓ ｔｈａｔ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｈａｄ
ｔｉｏｎｆｏｒ２４ｈｉｎｄｉｓｔｉｌｌｅｄｗａｔｅｒａｔ４℃ꎬｆｏｌｌｏｗｅｄｂｙｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｆｏｒｆｏｕｒ
ｔｈｅ ｓａｍｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５℃ꎻ
ｄａｙｓａｔ２５℃
ｎａｍｅｌｙꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｔｏｔａｌ ＤＢＩ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｗｉｔｈ ｔｉｍｅ.
２３ Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
Ａｆｔｅｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ＭＧ￣
Ｗｅ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ｔｈｅ ｅｍｂｒｙｏ ａｘｅｓ ｏｆ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｍａｒｋｅｄｌｙꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｌｅｖｅｌｓ
ｓｅｅｄｓ ａｆｔｅｒ ｔｈｅｉｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ｗａｔｅｒ ｆｏｒ ０ｈ (ｃｏｎｔｒｏｌ)ꎬ ｏｆ ＰＧ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｅｃｒｅａｓｅｄꎻ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ
３ｈꎬ ａｎｄ ２４ｈ ａｔ ２５℃ ｏｒ ４℃ꎬ ａｎｄ ｔｈｅｎ ａｔ ｏｎｅ ａｎｄ ｏｆ ＰＩꎬ ＰＥꎬ ＰＣꎬ ＰＡꎬ ａｎｄ ＰＳ ｃｈａｎｇｅｄ ｖｅｒｙ ｌｉｔｔｌｅ.
ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ ｆｏｒ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ Ｔｈｅ ｅｉｇｈｔ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｃａｎ ｂｅ ｄｉｖｉｄｅｄ ｉｎｔｏ
ａｎａｌｙｓｉｓ. Ｂａｓｅ ｏｎ ｔｈｅ ｗａｔｅｒ ｕｐｔａｋｅ (ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａ￣ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｔｙｐｅｓ. Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ￣
ｔａ)ꎬ ｔｈｅｓｅ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｔｉｍｅｓ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｐｈａｓｅｓ ｃｌｕｄｅ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧꎬ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ
ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ (Ｂｅｗｌｅｙꎬ １９９７ꎻ Ｙｉｎ .ꎬ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ (Ｊａｒｖｉｓ .ꎬ
ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
２００９ꎻ Ｈａｎ .ꎬ ２０１３). Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ３ ｈ ｒｅｐｒｅ￣ ２０００ꎻ Ｄｕｂｏｔｓ .ꎬ ２０１０). Ｆｉｖｅ ｏｆ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｃｌａｓ￣
ｓｅｎｔｅｄ ｔｈｅ ｐｅｒｉｏｄ ｏｆ ｒａｐｉｄ ｉｎｉｔｉａｌ ｕｐｔａｋｅ (ｐｈａｓｅ Ｉ)ꎬ ｓｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ (ＰＣꎬ ＰＥꎬ ＰＩꎬ ＰＳꎬ ａｎｄ ＰＡ) ｂｅｌｏｎｇ ｔｏ
ｅｔ ａｌ
ｗｈｅｒｅａｓ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ２４ ｈ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｔｈｅ ｐｌａｔｅａｕ ｔｈｅ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｔｙｐｅ (Ｌｉ .ꎬ ２００８ ). ＰＧ ｌｉｐｉｄｓ
ｐｈａｓｅ (ｐｈａｓｅ ＩＩ). Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｒａｄｉｃｌｅｓ ｉｎｃｌｕｄｅ ｂｏｔｈ ｃｌａｓｓｅｓ: ３４∶４ ＰＧ (ｔｏｔａｌ ｃａｒｂｏｎ ｎｕｍ￣
ｔｈｒｏｕｇｈ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｃｏａｔ １ ｄａｙ ａｆｔｅｒ ｔｈｅ ｂｅｇｉｎｎｉｎｇ ｏｆ ｂｅｒ: ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｎｕｍｂｅｒ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｈａｒｂｏｕｒｓ ａ １６∶１
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｈａｄ ｃｏｍｐｌｅｔｅｄ ａｃｙｌ ｃｈａｉｎꎬ ｉｓ ｐａｒｔ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅꎬｗｈｅｒｅａｓ
植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷
１９２ ３６
ｂｏｔｈ ３４∶１ ＰＧ ａｎｄ ３４∶２ ＰＧ ａｒｅ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ (Ｔａｂｌｅ １). Ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
(Ｗｅｌｔｉ .ꎬ ２００２ꎻ Ｍａｒｅｃｈａｌ .ꎬ １９９７). Ｉｎ ｓｏｙ￣ ｍｅｍｂｒａｎｅ ＤＢＩ ａｎｄ ｄｅｃｒｅａｓｅｓ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＰＧ
ｂｅａｎ ｓｅｅｄ ａｘｅｓꎬ ＰＧ ｉｎｃｌｕｄｅｓ ３４∶１ ＰＧꎬ ３４∶２ ＰＧꎬ ＤＢＩ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｗｅｒｅ ｓｌｏｗｅｒ
ａｎｄ ３４∶３ ＰＧꎬ ｂｕｔ ｎｏｔ ３４∶４ ＰＧ (ｄａｔａ ｎｏｔ ｓｈｏｗｎ). ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ２５℃. Ｆｏｒ ｅｘ￣
Ａｃｃｏｒｄｉｎｇｌｙꎬ ｉｎ ｔｈｉｓ ｃａｓｅꎬ ＰＧ ｃａｎ ｂｅ ｃｌａｓｓｉｆｉｅｄ ａｓ ａｍｐｌｅꎬ ｔｈｅ ＤＧＤＧＤＢＩ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ４℃ (４５７)
ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ. Ａｓ ｓｕｃｈꎬ ｔｈｅ ｄａｔａ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｉｎ ｗａｓ ｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈａｔ ａｔ２５℃ (４９０) ａｆｔｅｒ ｏｎｅ ｄａｙ ｏｆ
ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｔｈａｔ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ (Ｔａｂｌｅ １). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｎｏ
ｌｉｐｉｄｓ ａｒｅ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｙ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃. ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｆｔｅｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｔｈｅｓｅ ｒｅ￣
Ｔｈｅｓｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｍａｙ ｂｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉａｌ ｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｔｈａｔ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｄｅｌａｙｅｄ ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ
ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ.
２６ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｂｅｔｗｅｅｎ ＬＸ
ｍｅｍｂｒａｎｅｓ. Ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｈａｄ ｖｅｒｙ ｌｏｗ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ａｎｄ Ｒ５ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
ＤＢＩ (Ｔａｂｌｅ １)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ ｔｈａｔ ｐｌａｓｔｉｄｓ ｗｅｒｅ
ｓｃａｒｃｅ ｉｎ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ. Ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍ￣ Ｓｅｖｅｒｅ ｉｎｊｕｒｙ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｉｎ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｂｒａｎｅ ＤＢＩ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ａｌｏｎｇ ｗｉｔｈ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. ｔｉｏｎ ａｔ ａ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ. Ｔｏ ｒｅｖｅａｌ ｗｈｅｔｈｅｒ ＤＢＩ
Ｔｈｉｓ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ｃｈａｎｇｅ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕ￣
ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｉｓ ｐｅｒｉｏｄ. ｒｙꎬ ｗｅ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｈｅ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ
Ｂｅｃａｕｓｅ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ａｒｅ ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｃｏｍｐｏ￣ ｏｆ Ｒ５ ｗｉｔｈ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ＬＸ ｓｅｅｄｓ ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍ￣
ｎｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｙｌａｋｏｉｄ ｍｅｍｂｒａｎｅｓꎬｔｈｅｙ ａｒｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｏｎ￣ ｂｉｂｉｔｉｏｎ (Ｔａｂｌｅ １). Ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｅｘ￣
ｔｒｉｂｕｔｏｒｓ ｔｏ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｙ ａｌｓｏ ｈｉｂｉｔｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ. Ｉｎ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｔ
ｈａｒｂｏｕｒ ａ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｔｒｉｅｎｏｉｃ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ. ｃｕｌｔｉｖａｒ ＬＸꎬ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｃａｕｓｅｄ ｄｒａｍａｔｉｃ ｉｎ￣
Ｆｏｒ ａｌｌ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓｅｓꎬ ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｃｒｅａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｔｏｔａｌ ＤＢＩ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ
ｗｅｒｅ ｓｍａｌｌ ａｔ ｐｈａｓｅｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｄｕｒｉｎｇ (ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ)ꎬ ｗｉｔｈ ＭＧＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ ｆｒｏｍ
ｐｈａｓｅ ＩＩＩꎬ ｄｒａｍａｔｉｃ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ ｔｏｏｋ ｐｌａｃｅ ｉｎ ｂｏｔｈ ｔｈｅ ３７５ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ ５７６ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ ｄ). Ｈｏｗｅｖ￣
ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉ￣ ｅｒꎬ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｄｉｄ ｎｏｔ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｏｒ ｅｖｅｎ ｄｅ￣
ｖａｒｓ. Ｔｈｉｓ ｗａｓ ｐｒｏｂａｂｌｙ ｂｅｃａｕｓｅꎬ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｃｒｅａｓｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｃｕｌｔｉｖａｒ Ｒ５ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉ￣
(ｐｈａｓｅｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ)ꎬ ｓｅｅｄｓ ｍａｉｎｌｙ ａｄｊｕｓｔ ｔｈｅｉｒ ｌｉｐｉｄ ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ: ＭＧＤＧ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ ５２１ (ｃｏｎ￣
ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ｅｘｉｓｔｉｎｇ ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｒｅ￣ ｔｒｏｌ) ｔｏ ４６５ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ｄ). Ｔｈｉｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ
ｓｐｏｎｄ ｔｏ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｈｙｄｒａｔｉｏｎꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｅｎｚｙｍｅｓ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４℃ ｄｉｆｆｅｒｅｄ
ｉｎｉｔｉａｔｅ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ ｔｈｅ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ ｎｅｗ ｐｏｌｙｕｎ￣ ｍａｒｋｅｄｌｙ ｆｒｏｍ ｔｈａｔ ｏｆ ＬＸ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈ ｎｏｒｍａｌ ｇｅｒｍｉｎａ￣
ｓａｔｕｒａｔｅｄ ｏｒ ｓａｔｕｒａｔｅｄ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｒｅｓｔｏｒｅ ｔｉｏｎ. Ｌｏｗ ＤＢＩ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｉｎ Ｒ５
ｔｈｅｉｒ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｓｔａｔｅ ｐｏｓｔ￣ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｓｅｅｄｓ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅｉｒ ｓｅｖｅｒｅ ｉｎｊｕｒｙ
(ｐｈａｓｅ ＩＩＩ). Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｔｈｅ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｄ ｌｉｔｔｌｅ ｄｕ￣ ｄｕｅ ｔｏ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ. Ｉｎ ｏｔｈｅｒ ｗｏｒｄｓꎬ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ
ｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ｂｕｔ ｄｉｓｐｌａｙｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ ａｔ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｏｆ ｓｏｙ￣
ｐｈａｓｅ ＩＩＩꎻ ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｗａｓ ｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｏ ｂｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒ￣
ｔｈｅ ｍａｉｎ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｄｕｒｉｎｇ ｐｏｓｔ￣ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. ａｎｃｅ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ.
２５ Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｏｎ ｔｈｅ ＤＢＩ
Ｇｉｖｅｎ ｔｈａｔ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｄｏ ｎｏｔ ｃｏｎｔａｉｎ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓ
ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｔｏｌｅｒａｎｔ ｓｅｅｄｓ
ｆｏｒ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓꎬ ｔｈｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓ
Ｔｏ ｓｔｕｄｙ ｈｏｗ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｆｆｅｃｔｓ ＤＢＩꎬ ｗｅ ｔｏ ｐｒｏｖｉｄｅ ＡＴＰ ｄｕｒｉｎｇ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｉｓ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ
ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ＬＸｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ２５℃ ｆｏｒ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｏｖｅｒｃｏｍｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ａｎｄ ｔｏ
ａｎｄ ｔｈｏｓｅ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ４ ℃. Ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅｓ ｇｒｏｗ. Ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｒｅｑｕｉｒｅｓ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｍｅｍ￣
ｉｎ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｗｅｒｅ ｂｒａｎｅ ｐｏｌｙｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ (Ｍｃｃｏｎｎ ａｎｄ Ｂｒｏｗｓｅꎬ １９９８).
ｓｉｍｉｌａｒ ｂｅｔｗｅｅｎ ｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ｎｏｒｍａｌ ａｎｄ ｃｏｌｄ Ａ ｈｉｇｈ ＤＢＩ ｈｅｌｐｓ ｔｏ ｍａｉｎｔａｉｎ ｔｈｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｏｆ ｍｅｍ￣
期 ｅｔ ａｌ
２ ＹＵ ａｎｄ ＬＩ .: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ １９ ３
ｂｒａｎｅｓ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｓｕｓｔａｉｎ ｔｈｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｔｉｖｅｌｙ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｔｒｉｅｎｏｉｃ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ.
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｔｈｅｍｓｅｌｖｅｓ. Ｔｈｅ ｄｅｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ ｓｔａｒｔｓ ｗｉｔｈ
ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧꎬ ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｙ￣ ｔｈｅ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ １６∶０ ａｎｄ １８∶０ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ (Ｗａｌｌｉｓ
ｅｔ ａｌ
ｌａｋｏｉｄ ｍｅｍｂｒａｎｅｓꎬ ａｒｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｏｒｓ ｔｏ ａｎｄ Ｂｒｏｗｓｅꎬ２００２ꎻＺｈｅｎｇ .ꎬ２０１１). Ｄｅｓａｔｕｒａｔｉｏｎ
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｙ ｈａｒｂｏｕｒ ａ ｒｅｌａ￣ ｉｓ ｍｅｄｉａｔｅｄ ｂｙ ａ ｓｅｒｉｅｓ ｏｆ ｄｅｓａｔｕｒａｓｅｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｌｏｃａｔｅｄ
Ｔａｂｌｅ１ Ｃｈａｎｇｅｓｉｎｔｈｅｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄｉｎｄｅｘ(ＤＢＩ) ｏｆｅａｃｈｌｉｐｉｄｃｌａｓｓａｔ２５℃ ｏｒ４℃ ｉｎＬＸａｎｄＲ５
Ｓｅｅｄｓｕｎｄｅｒｗｅｎｔｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎｉｎｗａｔｅｒａｔ２５℃ ｏｒ４℃ ｆｏｒ３ｈａｎｄ２４ｈꎬａｎｄｗｅｒｅｔｈｅｎｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄｔｏ２５℃ ｆｏｒｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｆｏｒｏｎｅａｎｄｔｈｒｅｅ
ＳＥ ｎ Ｐ
ｄａｙｓ. Ｖａｌｕｅｓａｒｅｍｅａｎｓ± ( ＝４ｏｒ５).Ｖａｌｕｅｓｉｎｔｈｅｓａｍｅｒｏｗｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｅｔｔｅｒｓａｒｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｄｉｆｆｅｒｅｎｔ( <００５).ＤＢＩ＝(∑[Ｎ
×ｍｏｌ％ ｍｏｌｅｃｕｌａｒｓｐｅｃｉｅｓ])/１００ꎬｗｈｅｒｅＮｉｓｔｈｅｎｕｍｂｅｒｏｆｄｏｕｂｌｅｂｏｎｄｓｉｎｅａｃｈｍｏｌｅｃｕｌａｒｓｐｅｃｉｅｓ. ＬＸꎬＬｉａｏｘｉｎꎻＲ５ꎬＲｉｂｅｎ５
Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄｉｎｄｅｘ(ＤＢＩ)
Ｌｉｐｉｄ
ｃｌａｓｓ Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ/℃ Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
３ｈ:ｐｈａｓｅＩ) ２４ｈ:ｐｈａｓｅＩＩ １ｄ:ｐｈａｓｅＩＩＩ ３ｄ:ｐｈａｓｅＩＩＩ
ｂ ａ ｂ ｃ ｃ
２５ ２３７ ± ００３ ２４８ ± ００２ ２３６ ± ００１ １６９ ± ００５ １６４ ± ００２
ＬＸ ４ ２３７ ± ００３ｂ ２４０ ± ００３ｂ ２４８ ± ００３ａ １８８ ± ００８ｃ １５９ ± ００４ｄ
ＰＧ ａ ａ ａ ｂ ｃ
２５ ２４３ ± ００１ ２４３ ± ００３ ２４１ ± ００２ １９８ ± ００６ １５９ ± ００６
Ｒ５ ４ ２４３ ± ００１ａ ２３３ ± ００１ｂ ２４４ ± ００３ａ ２０９ ± ００３ｃ １９３ ± ００５ｄ
ａｂ ａ ｂ ｄ ｃ
２５ ２５１ ± ００１ ２５２ ± ００１ ２５０ ± ００１ ２４２ ± ００１ ２６８ ± ００２
ＬＸ ４ ２５１ ± ００１ｂ ２５４ ± ００２ａ ２５３ ± ００１ａ ２３８ ± ００１ｃ ２５２ ± ００２ａｂ
ＰＩ ｂ ｂ ｃ ｄ ａ
２５ ２５３ ± ００２ ２５４ ± ００１ ２４９ ± ００１ ２３６ ± ００１ ２７０ ± ００１
Ｒ５ ４ ２５３ ± ００２ａ ２５４ ± ００２ａ ２５６ ± ００１ａ ２３９ ± ００２ｂ ２３６ ± ００１ｂ
ａ ｂ ｂ ｃ ａｂ
２５ ３２９ ± ００３ ３２４ ± ００６ ３２４ ± ００３ ３１３ ± ００２ ３２８ ± ００１
ＬＸ ４ ３２９ ± ００３ａ ３２８ ± ００３ａ ３２４ ± ００７ａｂ ３１９ ± ００１ｂ ３２１ ± ００４ｂ
ＰＥ ｂ ａ ｃ ｄ ｃ
２５ ３３４ ± ００１ ３３７ ± ００３ ３２８ ± ００１ ３１６ ± ００１ ３２８ ± ００２
Ｒ５ ４ ３３４ ± ００１ａ ３３０ ± ００５ａ ３３４ ± ００４ａ ３２２ ± ００２ｂ ３２４ ± ００１ｂ
ｂｃ ｃ ｃ ｂ ａ
２５ ３４５ ± ００４ ３４１ ± ００３ ３４１ ± ００４ ３４７ ± ００７ ３６７ ± ００１
ＬＸ ４ ３４５ ± ００４ｂｃ ３４７ ± ００３ｂ ３３９ ± ００１ｄ ３４３ ± ００３ｃ ３５６ ± ００１ａ
ＰＣ ｂ ｂ ｂ ｃ ａ
２５ ３４８ ± ００１ ３４６ ± ００２ ３４９ ± ００５ ３４２ ± ００３ ３６５ ± ００２
Ｒ５ ４ ３４８ ± ００１ａｂ ３４９ ± ００２ａ ３４５ ± ００３ｂ ３４６ ± ００２ａｂ ３３５ ± ００３ｃ
ｂ ａ ａ ｃ ｂ
２５ ３３４ ± ００３ ３４１ ± ００３ ３４１ ± ００６ ３２０ ± ００４ ３３５ ± ００１
ＬＸ ４ ３３４ ± ００３ｂ ３４３ ± ００２ａ ３４３ ± ００２ａ ３２６ ± ００５ｃ ３２９ ± ００５ｃ
ＰＡ ｂ ａ ｂ ｃ ｃ
２５ ３４０ ± ００１ ３５８ ± ００４ ３４５ ± ００２ ３３０ ± ００６ ３２９ ± ００３
Ｒ５ ４ ３４０ ± ００１ｃ ３４７ ± ００２ｂ ３５５ ± ００２ａ ３３８ ± ００４ｃ ３３１ ± ００４ｄ
ｃ ｂ ｂ ｃ ａ
２５ ２２４ ± ００２ ２３０ ± ００３ ２２９ ± ００３ ２２２ ± ００１ ２３７ ± ００２
ＬＸ ４ ２２４ ± ００２ｂ ２３２ ± ００９ａ ２２６ ± ００１ａｂ ２２４ ± ００１ｂ ２３０ ± ００１ａｂ
ＰＳ ｃ ａｂ ｂ ｄ ａ
２５ ２２７ ± ００３ ２３５ ± ００６ ２３２ ± ００２ ２２２ ± ００２ ２３８ ± ００２
Ｒ５ ４ ２２７ ± ００３ｂ ２５０ ± ０１６ａ ２３０ ± ００１ｂ ２２５ ± ００１ｂ ２２５ ± ００１ｂ
ｄ ｃ ｃ ｂ ａ
２５ ３９５ ± ０１６ ４３３ ± ０１１ ４３６ ± ００６ ５５４ ± ００４ ５８０ ± ００１
ＬＸ ４ ３９５ ± ０１６ｄ ４０２ ± ０４８ｃｄ ４３７ ± ００４ｃ ５２９ ± ０１４ｂ ５７６ ± ００２ａ
ＭＧＤＧ ｂ ｄ ｄ ｃ ａ
２５ ５２１ ± ００５ ４４０ ± ００９ ４４４ ± ００９ ４９９ ± ０１０ ５７９ ± ００１
Ｒ５ ４ ５２１ ± ００５ａ ４０９ ± ０１６ｄ ４３６ ± ００３ｃ ４６８ ± ００１ｂ ４６５ ± ０１３ｂ
ｃ ｃ ｄ ｂ ａ
２５ ４５６ ± ００７ ４４８ ± ０１０ ４２７ ± ００２ ４９０ ± ００６ ５１３ ± ００１
ＬＸ ４ ４５６ ± ００７ｂ ４６０ ± ００８ｂ ４３４ ± ００５ｃ ４５７ ± ００６ｂ ５１７ ± ００３ａ
ＤＧＤＧ ｂ ｂ ｃ ｃ ａ
２５ ４６６ ± ０１０ ４６０ ± ００２ ４４６ ± ００２ ４４９ ± ００８ ５１１ ± ００１
Ｒ５ ４ ４６６ ± ０１０ｂ ４８２ ± ０１３ａ ４５９ ± ００６ｂ ４２７ ± ００１ｃ ４２４ ± ００７ｃ
ｃ ｃ ｃ ｂ ａ
２５ ３１７ ± ００２ ３１９ ± ００８ ３２０ ± ００３ ３３１ ± ００１ ３７４ ± ００２
ＬＸ ４ ３１７ ± ００２ｃ ３２４ ± ００５ｂ ３２２ ± ００３ｂ ３２４ ± ００３ｂ ３５８ ± ００３ａ
Ｔｏｔａｌ ｄ ｃ ｃｄ ｂ ａ
２５ ３２０ ± ００２ ３２８ ± ００２ ３２４ ± ００４ ３３９ ± ００３ ３７６ ± ００４
Ｒ５ ４ ３２０ ± ００２ａｂ ３２８ ± ００３ａ ３２６ ± ００１ａ ３２４ ± ００３ａ ３１６ ± ００４ｂ
植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷
１９４ ３６
ｉｎ ｔｈｅ ｅｎｄｏｐｌａｓｍｉｃ ｒｅｔｉｃｕｌｕｍ ａｎｄ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓꎻ ｔｈｅｓｅ ｃｈａｎｇｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎ￣
ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ｈａｖｅ ｓｉｍｉｌａｒ ｃａｔａｌｙｔｉｃ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｗｉｔｈｉｎ ｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ (Ｒ５)ꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｓｍａｌｌ ｃｈａｎｇｅｓ ｂｅｉｎｇ
ｔｈｅｉｒ ａｃｔｉｖｅ ｓｉｔｅｓ. Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｌｉｔｔｌｅ ｉｓ ｋｎｏｗｎ ａｂｏｕｔ ｔｈｅ ｖｅｒｙ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎ ｏｆ ＬＸ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃
ｅｎｚｙｍａｔｉｃ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｂｙ ｗｈｉｃｈ ｄｅｓａｔｕｒａｔｅｄ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅ Ｉ. Ｔｈｉｓ ｆｉｎｄｉｎｇ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ＰＥＧ
ａｒｅ ｓａｔｕｒａｔｅｄꎬｌｏｗ ＤＢＩ ｌｅｖｅｌｓｉｎ Ｒ５ｓｅｅｄｓｃｏｕｌｄ ｒｅｓｕｌｔ ｐｒｉｍｉｎｇ ｄｉｄ ｎｏｔ ｄｉｒｅｃｔｌｙ ｃａｕｓｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ
ｆｒｏｍ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ ａｔ ａ ｌｏｗ ＤＢＩꎬ ｂｕｔ ｒａｔｈｅｒ ｉｎｄｕｃｅｄ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｉｎ ｐｒｅｐａｒａ￣
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ. Ａｃｃｏｒｄｉｎｇｌｙꎬ ｈｉｇｈｅｒ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔ￣ ｔｉｏｎ ｆｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ.
２８ Ｄｒａｍａｔｉｃ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｐｒｏｆｉｌｅｓ ｏｃｃｕｒ ｉｎ
ｅｄ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｍｉｇｈｔ ａｃｃｏｕｎｔ ｆｏｒ ｔｈｅ
ＰＥＧ ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ＬＸ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ.
２７ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ ｏｎ ＤＢＩ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｓｔｒｅｓｓ
ｌｉｐｉｄｓ
Ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｈｏｗ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＰＥＧ ｏｓｍｏｐｒｉｍ￣
Ｔｈｅ ａｂｏｖｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ＰＥＧ ｏｓ￣ ｉｎｇ ｏｃｃｕｒ ｕｎｄｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎬ ｗｅ ａｎａｌｙｓｅｄ
ｍｏｔｉｃ ｐｒｅｔｒｅａｔｍｅｎｔ (ｐｒｉｍｉｎｇ ｏｒ ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ) ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ
ｒｅｄｕｃｅｄ ｔｈｅ ｄａｍａｇｅ ｄｕｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４℃ ｆｏｒ ３ ａｎｄ ２４ｈꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ
Ｒ５ ｓｅｅｄｓ. Ｗｅ ｐｒｏｆｉｌｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｉｎ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｏｓ￣ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ ｆｏｒ ｏｎｅ ａｎｄ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ (Ｔａｂｌｅ
ｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｆｏｒ ｏｎｅ ａｎｄ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ３). Ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ
ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｔｅｓｔ ｗｈｅｔｈｅｒ ＰＥＧ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｃｏｎｔｉｎｕａｌｌｙ ｏｖｅｒ ｔｈｅ ｐｅｒｉｏｄ ｓｔｕｄｉｅｄ: ＭＧ￣
ｃｈａｎｇｅｄ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ＤＢＩ (Ｔａｂｌｅ ２). Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉ￣ ＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ ＤＢＩ ｏｆ ５１３ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ ５７２
ｃａｔｅ ｔｈａｔ ＰＥＧ ｏｓｍｏｐｒｉｍｉｎｇ ｓｌｉｇｈｔｌｙ ｂｕｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ｄ)ꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ＤＧＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ
ＳＥ
Ｔａｂｌｅ２ Ｃｈａｎｇｅｓｉｎｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄｉｎｄｅｘ(ＤＢＩ) ｏｆｅａｃｈｌｉｐｉｄｃｌａｓｓｉｎＲ５ｓｏｙｂｅａｎｓｅｅｄｓｄｕｒｉｎｇｔｈｅＰＥＧｐｒｉｍｉｎｇ. Ｖａｌｕｅｓａｒｅｍｅａｎｓ±
ｎ Ｐ
( ＝４ｏｒ５). Ｖａｌｕｅｓｉｎｔｈｅｓａｍｅｒｏｗｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｅｔｔｅｒｓａｒｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｄｉｆｆｅｒｅｎｔ( <００５)
Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄｉｎｄｅｘ(ＤＢＩ)
Ｌｉｐｉｄｃｌａｓｓ
Ｃｏｎｔｒｏｌ ＰＥＧ１ｄ ＰＥＧ３ｄ ＡｆｔｅｒＰＥＧｐｒｉｍｉｎｇ
ＰＧ ２４４ ± ００７ｃ ２６２ ± ００６ｂ ２７７ ± ００４ａ ２７８ ± ００５ａ
ＰＩ ２５２ ± ００２ｂ ２５２ ± ００１ｂ ２５３ ± ００２ｂ ２５８ ± ００２ａ
ＰＥ ３５０ ± ００３ａ ３３７ ± ００２ｂ ３３９ ± ００１ｂ ３３９ ± ００２ｂ
ＰＣ ３５５ ± ００３ａ ３３８ ± ００３ｂ ３３５ ± ００２ｂ ３４１ ± ００３ｂ
ＰＡ ３３５ ± ００２ａ ３３４ ± ００１ａ ３３１ ± ００１ｂ ３２８ ± ００２ｂ
ＰＳ ２４７ ± ００６ｂ ２５１ ± ００３ｂ ２６７ ± ００７ａ ２５５ ± ００９ａｂ
ＭＧＤＧ ４９３ ± ０１２ｂ ４９２ ± ０１１ｂ ５２１ ± ００８ａ ５１３ ± ０１７ａｂ
ＤＧＤＧ ４５９ ± ０１３ａ ４４８ ± ００８ａｂ ４５１ ± ０１１ａｂ ４３４ ± ００８ｂ
Ｔｏｔａｌ ３１９ ± ００３ａ ３１３ ± ００１ｂ ３１１ ± ００２ｂ ３１２ ± ００２ｂ
Ｔａｂｌｅ３ Ｃｈａｎｇｅｓｉｎｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄｉｎｄｅｘ(ＤＢＩ) ｏｆｅａｃｈｌｉｐｉｄｃｌａｓｓｄｕｒｉｎｇｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌｃｈｉｌｌｉｎｇａｎｄｐｏｓｔ￣ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎｆｏｒＲ５ｓｏｙｂｅａｎｓｅｅｄｓａｆｔｅｒ
ＳＥ ｎ Ｐ
ＰＥＧｐｒｉｍｉｎｇ. Ｖａｌｕｅｓａｒｅｍｅａｎｓ± ( ＝４ｏｒ５). Ｖａｌｕｅｓｉｎｔｈｅｓａｍｅｒｏｗｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｅｔｔｅｒｓａｒｅｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｄｉｆｆｅｒｅｎｔ( <００５)
Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄｉｎｄｅｘ(ＤＢＩ)
Ｌｉｐｉｄｃｌａｓｓ
ＡｆｔｅｒＰＥＧｔｒｅａｔｍｅｎｔ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ３ｈ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ２４ｈ Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ１ｄ Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ３ｄ
ＰＧ ２７８ ± ００５ａ ２７３ ± ０１１ａ ２７８ ± ００５ａ １９６ ± ００１ｂ １５３ ± ００１ｃ
ＰＩ ２５８ ± ００３ｂ ２５８ ± ００３ｂ ２６４ ± ００１ａ ２３７ ± ００１ｃ ２６１ ± ００１ｂ
ＰＥ ３３９ ± ００２ａ ３３８ ± ００１ａ ３３７ ± ００２ａ ３１８ ± ００２ｃ ３２９ ± ００１ｂ
ＰＣ ３４１ ± ００３ｃ ３３８ ± ００４ｃ ３５２ ± ００２ｂ ３４２ ± ００１ｃ ３６７ ± ００４ａ
ＰＡ ３２８ ± ００２ｂ ３２１ ± ００３ｃ ３４７ ± ００６ａ ３２０ ± ００３ｃ ３３１ ± ００６ｂ
ＰＳ ２５５ ± ００９ａ ２５０ ± ００７ａ ２２７ ± ００２ｂ ２２１ ± ００２ｃ ２３０ ± ００２ｂ
ＭＧＤＧ ５１３ ± ０１７ｂ ４７０ ± ０１９ｃ ４３８ ± ００５ｄ ５３２ ± ０１３ｂ ５７２ ± ００１ａ
ＤＧＤＧ ４３４ ± ００８ｃ ４４８ ± ０１３ｃ ４２５ ± ０１３ｃ ４７７ ± ００８ｂ ５１５ ± ００３ａ
Ｔｏｔａｌ ３１２ ± ００２ｄ ３１７ ± ００１ｃ ３３５ ± ００１ｂ ３３９ ± ００４ｂ ３５４ ± ００２ａ
期 ｅｔ ａｌ
２ ＹＵ ａｎｄ ＬＩ .: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ １９ ５
４３４ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ ５１５ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ ｄ). Ｆｏｒ ｅｘ￣ Ｔｈｅ ｄｅｌａｙ ｏｒ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ
ｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＧ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｃｏｎ￣ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｗａｓ ｔｈｕｓ
ｔｉｎｕａｌｌｙꎬ ｆｒｏｍ ２７８ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ １５３ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｔｈｅ ｃａｕｓｅ ｏｆ ｉｎｊｕｒｙ ｄｕｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｔｈｅ
３ ｄ). Ｔｈｅｓｅ ｒｅｍａｒｋａｂｌｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｍａｉｎｌｙ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ
ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅ ＩＩＩ. Ｔｈｅｓｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｗｅｒｅ ｔｈｅ ｓａｍｅ ａｓ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｉｃ ｍｅｍ￣
ｔｈｏｓｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｔ２５℃. ｂｒａｎｅｓ ｎｅｅｄｅｄ ｔｏ ｓｕｐｐｏｒｔ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ｍｅｍ￣
Ｔｈｅｓｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｔｈａｔ ＰＥＧ ｏｓｍｏｐｒｉｍｉｎｇ ｈａｄ ａ ｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ.
ｌａｒｇｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ＤＢＩ ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ｄｕｒｉｎｇ Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ａｎ ｉｎ￣
ｐｈａｓｅｓ ＩＩ ａｎｄ ＩＩＩ. Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ ｗａｓ ｔｏ ｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ｉｎｃｒｅａｓｅ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍ￣ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｔｏ￣
ｂｒａｎｅ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｅｎｈａｎｃｅ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉ￣ ｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ ｓｏｙｂｅａｎｓ. Ｔｈｅｓｅ
ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｐｒｉｍｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｃｏｕｌｄ ｆｉｎｄｉｎｇｓ ｈａｖｅ ｎｏｔ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｆｏｒ ｓｏｙ￣
ｓｙｎｔｈｅｓｉｓｅ ｄｅｓａｔｕｒａｓｅｓ ｕｎｄｅｒ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ｏｒ￣ ｂｅａｎ ｓｅｅｄｓꎬ ａｎｄ ｓｈｏｕｌｄ ｐｒｏｖｉｄｅ ｆｕｒｔｈｅｒ ｉｎｓｉｇｈｔ ｉｎｔｏ
ｄｅｒ ｔｏ ｃｈａｎｇｅ ｔｈｅｉｒ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ａｎｄ ｅｎｈａｎｃｅ ｔｈｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｏｆ ａｄａｐｔａｔｉｏｎ ｔｏꎬ ａｎｄ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｏｆꎬ
ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ. Ｔｈｉｓ ｒｅｓｕｌｔ ｆｕｒｔｈｅｒ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｓ ｔｈａｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｓｕｃｈ ｉｎｓｉｇｈｔｓ ｍｉｇｈｔ ｇｕｉｄｅ ｔｈｅ
ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｓｅｅｄ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ ｃｏｒｒｅ￣ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｓｅｅｄｓ. Ｆｕｒｔｈｅｒ ａｎａ￣
ｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅｉｒ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. ｌｙｓｅｓ ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｕｎｄｅｒｔａｋｅｎ ｔｏ ｓｔｕｄｙ ｔｈｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ
ｔｈａｔ ｕｎｄｅｒｌｉｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅｓｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ
３ Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ
ｉｎ ｔｈｅ ｗａｙ ｔｈａｔ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｆｆｅｃｔｓ ＤＢＩ.
Ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙ ｐｒｏｖｉｄｅｓ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｔｈａｔ ｔｈｅ
Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｍｅｎｔｓ
ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ : Ｔｈｅ ａｕｔｈｏｒｓ ｔｈａｎｋ Ｍａｒｙ Ｒｏｔｈ (Ｋａｎｓａｓ
Ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ) ｆｏｒ ｌｉｐｉｄ ａｎａｌｙｓｉｓ.
ｉｎ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｅｘｔｅｎｓｉｖｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｅｘｔｅｎｔ ｏｆ ｔｏｔａｌ Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ
:
ｌｉｐｉｄ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｎｄ ａｆ￣
ＢａｋｈｔＪꎬＢａｎｏＡꎬＤｏｍｉｎｙＰꎬ２００６.Ｔｈｅｒｏｌｅｏｆａｂｓｃｉｓｉｃａｃｉｄａｎｄｌｏｗ
ｔｅｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. ＬＸ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｓｉｍｉｌａｒ ｃｈａｎｇｅｓ ｔｏ Ｒ５ Ｃｉｃｅｒ ａｒｉｅｔｉｎｕｍ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｉｎ ｃｈｉｃｋｐｅａ ( ) ｃｏｌｄ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ. ＩＩ.
ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ２５℃. Ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｔｏｔａｌ ＤＢＩ ｉｎ￣ Ｅｆｆｅｃｔｓｏｎｐｌａｓｍａｍｅｍｂｒａｎｅｓｔｒｕｃｔｕｒｅａｎｄｆｕｎｃｔｉｏｎ [Ｊ].Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＢｏｔａｎｙ ５７
ｃｒｅａｓｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｍａｉｎｌｙ ｄｕｅ ꎬ (１４):３７０７—３７１５
ｅｔ ａｌ
ｔｏ ｔｈｅ ｍａｒｋｅｄ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｂｅｔｔａｉｅｂ Ｉꎬ Ｚａｋｈａｍａ Ｎꎬ Ｗａｎｎｅｓ ＷＡ .ꎬ ２００９. Ｗａｔｅｒ ｄｅｆｉｃｉｔ
ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ Ｓａｌｖｉａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ａｎｄ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｃｏｍｐｏｓｉ￣
ＤＢＩ. Ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｉｎ ＬＸ ａｆ￣ ＳｃｉｅｎｔｉａＨｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ １２０
ｔｉｏｎ [Ｊ]. ꎬ (２):２７１—２７５
ｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ꎬ ｂｕｔ ｔｈｅｓｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｗｅｒｅ ｓｉｇ￣ Ｔｈｅ Ｐｌａｎｔ
ＢｅｗｌｅｙＪＤꎬ １９９７. Ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｏｒｍａｎｃｙ [Ｊ].
ｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｓｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５℃. Ｃｅｌｌꎬ９(７):１０５５—１０６６
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅ ｉｎ Ｒ５ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ＢｒａｍｌａｇｅＷＪꎬＬｅｏｐｏｌｄＡＣꎬＰａｒｒｉｓｈＤＪꎬ１９７８. Ｃｈｉｌｌｉｎｇｓｔｒｅｓｓｔｏｓｏｙ￣
ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ６１
ｄｉｆｆｅｒｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｔｈａｔ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｕｐｏｎ ｎｏｒｍａｌ ｂｅａｎｓｄｕｒｉｎｇｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ [Ｊ]. ꎬ (４):５２５—
５２９
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ｗｈｅｎ ｅｖｅｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ. ＰＥＧ
ＣｈｒｉｓｔｉａＭꎬ１９６７. Ｐｅｒｉｏｄｓｏｆｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙｔｏｃｈｉｌｌｉｎｇｉｎｇｅｒｍｉｎａｔｉｎｇｃｏｔ￣
ｐｒｉｍｉｎｇ ｓｌｉｇｈｔｌｙ ｃｈａｎｇｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｉｎ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ４２
ｔｏｎ [Ｊ]. ꎬ (３):４３１—４３３
(Ｒ５). Ｉｔ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｔｈｅｉｒ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｎｊｕｒｙ ｄｕｅ ｔｏ ＤｅｖａｉａｈＳＰꎬＲｏｔｈＭＲꎬＢａｕｇｈｍａｎＥｅｔａｌ.ꎬ２００６.Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅｐｒｏｆｉ￣
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎬ ｍａｉｎｌｙ ｂｙ ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ ｔｈｅｉｒ ｌｉｎｇｏｆｐｏｌａｒｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓｆｒｏｍｏｒｇａｎｓｏｆｗｉｌｄ￣ｔｙｐｅＡｒａｂｉ￣
ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅｓ ＩＩ ａｎｄ ＩＩＩ. Ｇｉｖｅｎ ｔｈａｔ ｉｎ￣ ｄｏｐｓｉｓ ａｎｄ ａ ＰＨＯＳＰＨＯＬＩＰＡＳＥ Ｄ ａｌｐｈａ １ ｋｎｏｃｋｏｕｔ ｍｕｔａｎｔ
Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ６７
[Ｊ]. ꎬ (１７):１９０７—１９２４
ｃｒｅａｓｅｓ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｆａｖｏｒ ｔｈｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｏｆ ｍｅｍ￣ ｅｔａｌ
ＤｕｂｏｔｓＥꎬＡｕｄｒｙＭꎬＹａｍａｒｙｏＹ .ꎬ２０１０.Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎｏｆｔｈｅｃｈｌｏ￣
ｂｒａｎｅｓ ｔｏ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｉｎｊｕｒｙꎬ ｔｈｏｓｅ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈ
ｒｏｐｌａｓｔｍｏｎｏｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌｓｙｎｔｈａｓｅＭＧＤ１ｂｙｐｈｏｓｐｈａ￣
ｈｉｇｈｅｒ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｍｉｇｈｔ ｂｅ ｍｏｒｅ ｔｉｄｉｃａｃｉｄ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ [Ｊ]. Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８５
ｌｉｋｅｌｙ ｔｏ ｇｅｒｍｉｎａｔｅ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｓｔｒｅｓｓ. ꎬ (９):６００３—６０１１
植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 卷
１９６ ３６
ｅｔａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｂｏｔａ￣
ＨａｎＣꎬＹｉｎＸＪꎬＨｅＤＬ .ꎬ２０１３. Ａｎａｌｙｓｉｓｏｆｐｒｏｔｅｏｍｅｐｒｏｆｉｌｅｉｎ ｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎａｎｄｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ [Ｊ].
ｎｙ ５３
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｎｇｓｏｙｂｅａｎｓｅｅｄꎬ ａｎｄ ｉｔｓ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｗｉｔｈ ｒｉｃｅ ｓｈｏｗｉｎｇ ꎬ (３７８):２１５９—２１６６
ＰｌｏＳ ｅｔａｌ
ｔｈｅｓｔｙｌｅｓ ｏｆ ｒｅｓｅｒｖｅｓ ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｒｏｐｓ [Ｊ]. ＱｕａｒｔａｃｃｉＭＦꎬＰｉｎｚｉｎｏＣꎬＳｇｈｅｒｒｉＣＬ .ꎬ１９９５.Ｌｉｐｉｄ￣ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ
ＯＮＥ ８
ꎬ (２):ｅ５６９４７ ａｎｄｐｒｏｔｅｉｎｄｙｎａｍｉｃｓ ｉｎ ｔｈｙｌａｋｏｉｄｓ ｏｆ ｔｗｏ ｗｈｅａｔ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｄｉｆｆｅｒ￣
Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ １０８
ＨｏｂｂｓＰＲꎬ Ｏｂｅｎｄｏｒｆ ＲＬꎬ １９７２. Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｉｎｉｔｉａｌ ｓｅｅｄ ｍｏｉｓｔｕｒｅ ｅｎｔｌｙｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｔｏ ｄｒｏｕｇｈｔ [Ｊ]. ꎬ (１):
ａｎｄｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｏｎ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ １９１—１９７
ＣｒｏｐＳｃｉｅｎｃｅ １２ ｅｔａｌ
ｓｏｙｂｅａｎ [Ｊ]. ꎬ (５):６６４—６６７ ＲａｗｙｌｅｒＡꎬＰａｖｅｌｉｃＤꎬＧｉａｎｉｎａｚｚｉＣ .ꎬ１９９９.Ｍｅｍｂｒａｎｅｌｉｐｉｄｉｎ￣
ｅｔ ａｌ
ＪａｒｖｉｓＰꎬＤｏｒｍａｎｎＰꎬＰｅｔｏ ＣＡ .ꎬ２０００. Ｇａｌａｃｔｏｌｉｐｉｄ ｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ ｔｅｇｒｉｔｙｒｅｌｉｅｓｏｎａ ｔｈｒｅｓｈｏｌｄ ｏｆ ａｔｐ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｉｎ ｐｏｔａｔｏ ｃｅｌｌ
Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ １２０
ａｎｄ ａｂｎｏｒｍａｌ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ ｔｈｅ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ＭＧＤ ｃｕｌｔｕｒｅｓｓｕｂｍｉｔｔｅｄｔｏａｎｏｘｉａ [Ｊ]. ꎬ (１):
Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ
ｓｙｎｔｈａｓｅ１ ｍｕｔａｎｔ [Ｊ]. ２９３—３００
ＳｃｉｅｎｃｅｓｏｆｔｈｅＵｎｉｔｅｄＳｔａｔｅｓｏｆＡｍｅｒｉｃａ ９７
ꎬ (１４):８１７５—８１７９ Ｓｉｍｏｎ ＥＷꎬ １９７４. Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ｐｌａｎｔ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｅｒｍｅａｂｉｌｉｔｙ
ＮｅｗＰｈｙｔｏｌｏｇｉｓｔ ７３
Ｌｅｏｐｏｌｄ ＡＣꎬ １９８０. Ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｎｄ [Ｊ]. ꎬ (３):３７７—４２０
ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ６５ ｅｔ ａｌ
ｌｅａｋａｇｅ [Ｊ]. ꎬ (６):１０９６—１０９８ ＴｏｕｍｉＩꎬ Ｇａｒｇｏｕｒｉ Ｍꎬ Ｎｏｕａｉｒｉ Ｉ .ꎬ ２００８. Ｗａｔｅｒ ｓｔｒｅｓｓ ｉｎｄｕｃｅｄ
ｅｔａｌ
ＬｉＷＱꎬＷａｎｇＲꎬＬｉＭＹ .ꎬ２００８. Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎｏｆｅｘ￣ ｃｈａｎｇｅｓｉｎｔｈｅｌｅａｆｌｉｐｉｄｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｏｆｆｏｕｒｇｒａｐｅｖｉｎｅｇｅｎｏｔｙｐｅｓ
Ｂｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍ ５２
ｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃａｎｄｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｄｕｒｉｎｇ ｆｒｅｅｚｉｎｇ ａｎｄ ｐｏｓｔ￣ｆｒｅｅｚｉｎｇ ｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｄｒｏｕｇｈｔ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ [Ｊ]. ꎬ
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｉｎ [Ｊ]. (１):１６１—１６４
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２８３ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ
ꎬ (１):４６１—４６８ ＷａｌｌｉｓＪＧꎬＢｒｏｗｓｅＪꎬ２００２. Ｍｕｔａｎｔｓｏｆ ｒｅｖｅａｌｍａｎｙｒｏｌｅｓ
Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ Ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｉｎ Ｌｉｐｉｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ４１
Ｌｙｏｎｓ ＪＭꎬ １９７３. Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ [Ｊ]. ｆｏｒｍｅｍｂｒａｎｅｌｉｐｉｄｓ [Ｊ]. ꎬ (３):
ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙａｎｄＰｌａｎｔＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ ２４
ꎬ :４４５—４６６ ２５４—２７８
ｅｔ ａｌ ｅｔ ａｌ
ＭａｒｅｃｈａｌＥꎬＢｌｏｃｋＭＡꎬＤｏｒｎｅ ＡＪ .ꎬ１９９７. Ｌｉｐｉｄ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ＷｅｌｔｉＲꎬＬｉＷＱꎬ Ｌｉ ＭＹ .ꎬ ２００２. Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ
ＰｈｙｓｉｏｌｏｇｉａＰｌａｎｔａｒｕｍ
ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍｉｎｔｈｅｐｌａｓｔｉｄｅｎｖｅｌｏｐｅ [Ｊ]. ꎬ ｐｌａｎｔｓｔｒｅｓｓｒｅｓｐｏｎｓｅｓ:ＲｏｌｅｏｆｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐａｓｅＤａｌｐｈａｉｎｆｒｅｅｚｉｎｇ￣
１００ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
(１):６５—７７ ｉｎｄｕｃｅｄｌｉｐｉｄｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ [Ｊ].
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２７７
ＭｃｃｏｎｎＭꎬＢｒｏｗｓｅＪꎬ１９９８.Ｐｏｌｙｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄｍｅｍｂｒａｎｅｓａｒｅｒｅｑｕｉｒｅｄ ꎬ (３５):３１９９４—３２００２
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ
ｆｏｒｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｃｏｍｐｅｔｅｎｃｅ ｉｎ ａ ｍｕｔａｎｔ ｏｆ [Ｊ]. ＷｉｌｌｉｎｇＲＰꎬ Ｌｅｏｐｏｌｄ ＡＣꎬ １９８３. Ｃｅｌｌｕｌａｒ ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ａｔ ｌｏｗ￣ｔｅｍｐｅｒａ￣
ＴｈｅＰｌａｎｔＪｏｕｒｎａｌ １５ Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ７１
ꎬ (４):５２１—５３０ ｔｕｒｅａｓａｃａｕｓｅ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｅｓｉｏｎｓ [Ｊ]. ꎬ
ｅｔａｌ
Ｎａｖａｒｉ￣ＩｚｚｏＦꎬＱｕａｒｔａｃｃｉＭＦꎬＭｅｌｆｉＤ .ꎬ１９９３.Ｌｉｐｉｄｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ (１):１１８—１２１
ｏｆｐｌａｓｍａｍｅｍｂｒａｎｅｓｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｓｕｎｆｌｏｗｅｒｓｅｅｄｌｉｎｇｓｇｒｏｗｎｕｎ￣ ＷｏｏｄｓｔｏｃｋＬＷꎬ Ｔａｏ ＫＬꎬ １９８１. Ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｉｎｊｕｒｙ ｉｎ
Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍ ８７
ｄｅｒ ｗａｔｅｒ￣ｓｔｒｅｓｓ [Ｊ]. ꎬ (４): ５０８— ｌｏｗｖｉｇｏｒｓｏｙｂｅａｎｅｍｂｒｙｏｎｉｃａｘｅｓｂｙｏｓｍｏｔｉｃｃｏｎｔｒｏｌｏｆｗａｔｅｒ￣ｕｐ￣
ＰｈｙｓｉｏｌｏｇｉａＰｌａｎｔａｒｕｍ ５１
５１４ ｔａｋｅ [Ｊ]. ꎬ (１):１３３—１３９
ＯｂｅｎｄｏｒｆＲＬꎬＨｏｂｂｓＰＲꎬ１９７０. Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｓｅｅｄ ｍｏｉｓｔｕｒｅ ｏｎ ｔｅｍｐｅｒａ￣ ＸｕＬＸꎬＨａｎＬＢꎬＨｕａｎｇＢＲꎬ２０１１.Ｍｅｍｂｒａｎｅｆａｔｔｙａｃｉｄｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ
ＣｒｏｐＳｃｉｅｎｃｅ
ｔｕｒｅｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙｄｕｒｉｎｇｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎｏｆｓｏｙｂｅａｎ [Ｊ]. ꎬ ａｎｄ ｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｌｅｖｅｌｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｌｅａｆ ｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ
１０ Ｃｒｏｐ
(５):５６３—５６６ ａｎｄｐｏｓｔ￣ｄｒｏｕｇｈｔ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｋｅｎｔｕｃｋｙ ｂｌｕｅｇｒａｓｓ [Ｊ].
Ｓｃｉｅｎｃｅ ５１
Ｏｓｍｏｎｄ ＤＬꎬ Ｗｉｌｓｏｎ ＲＦꎬ Ｒａｐｅｒ ＣＤꎬ １９８２. Ｆａｔｔｙ￣ａｃｉｄ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ꎬ (１):２７３—２８１
ｅｔａｌ
ａｎｄ ｎｉｔｒａｔｅ ｕｐｔａｋｅ ｏｆ ｓｏｙｂｅａｎ ｒｏｏｔｓ ｄｕｒｉｎｇ ａｃｃｌｉｍａｔｉｏｎ ｔｏ ｌｏｗ￣ ＹｉｎＧＫꎬＳｕｎＨＭꎬＸｉｎＸ .ꎬ２００９. Ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌｄａｍａｇｅｉｎ ｔｈｅ
ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ７０
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ [Ｊ]. ꎬ (６):１６８９—１６９３ ｓｏｙｂｅａｎｓｅｅｄａｘｉｓｄｕｒｉｎｇｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｔｃｈｉｌｌｉｎｇｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ [Ｊ].
ＰｌａｎｔａｎｄＣｅｌｌＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ５０
Ｐｏｌｌｏｃｋ ＢＭꎬ １９６９. Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｌｉｍａ ｂｅａｎ ꎬ (７):１３０５—１３１８
Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ
ｓｅｅｄｓｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄｂｙｉｎｉｔｉａｌ ｓｅｅｄ ｍｏｉｓｔｕｒｅ [Ｊ]. ꎬ ＺｈｅｎｇＧＷꎬＣｈｅｎ Ｊꎬ Ｌｉ ＷＱꎬ ２０１２. Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｏｆ
４４ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ
(６):９０７—９１１ ｒｏｏｔｓ ｄｕｒｉｎｇ ｃａｔｅｃｈｉｎ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ [Ｊ].
ａｎｄＲｅｓｏｕｒｃｅｓ 植物分类与资源学报 ３４
ＰｏｌｌｏｃｋＢＭꎬＴｏｏｌｅＶＫꎬ１９６６. Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｐｅｒｉｏｄ ａｓ ｔｈｅ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｔｅｍ￣ ( )ꎬ (４):３８３—３９０
ｅｔ ａｌ
ｐｅｒａｔｕｒｅｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｔａｇｅ ｉｎ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｍａ ｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ [Ｊ]. ＺｈｅｎｇＧＷꎬＴｉａｎＢꎬＺｈａｎｇ ＦＪ .ꎬ２０１１. Ｐｌａｎｔ ａｄａｐｔａｔｉｏｎ ｔｏ ｆｒｅ￣
ＰｌａｎｔＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ４１
ꎬ (２):２２１—２２９ ｑｕｅｎｔａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓｂｅｔｗｅｅｎｈｉｇｈａｎｄｌｏｗｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ:ｒｅｍｏｄｅｌｌｉｎｇ
ｅｔ ａｌ
ＰｏｓｍｙｋＭＭꎬＣｏｒｂｉｎｅａｕ Ｆꎬ Ｖｉｎｅｌ Ｄ .ꎬ ２００１. Ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ ｏｆｍｅｍｂｒａｎｅｌｉｐｉｄｓａｎｄｍａｉｎｔｅｎａｎｃｅｏｆｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｌｅｖｅｌｓ [Ｊ].
ＰｌａｎｔＣｅｌｌａｎｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ ３４
ｒｅｄｕｃｅｓｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌａｎｄ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｄａｍａｇｅ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｃｈｉｌｌ￣ ꎬ (９):１４３１—１４４２
Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍ １１１
ｉｎｇｉｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ [Ｊ]. ꎬ (４): ＺｈｅｎｇＧＨꎬ１９８８. Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｔｈｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ａｎｄ ｔｈｅ
４７３—４８２ ｒｅｐａｒａｔｉｏｎｏｆｄａｍａｇｅｄｍｅｍｂｒａｎｅｓｙｓｔｅｍｓｉｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ [Ｊ].
ＳｃｉｅｎｃｅＣｈｉｎａＣｈｅｍｉｓｔｒｙ ３１
ＰｏｗｅｌｌＡＡꎬＭａｔｔｈｅｗｓＳꎬ１９７８. Ｔｈｅ ｄａｍａｇｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｗａｔｅｒ ｏｎ ｄｒｙ ꎬ (８):９３６—９３６
ＪｏｕｒｎａｌｏｆＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌＢｏｔ￣
ｐｅａｅｍｂｒｙｏｓｄｕｒｉｎｇｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ [Ｊ]. ＺｈｅｎｇＧＨꎬ １９９１. Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌꎬ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ ｕｌｔｒａｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ａｓ￣
ａｎｙ ２９
ꎬ (５):１２１５—１２２９ ｐｅｃｔｓｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ｉｎ ｓｅｅｄｓ: ａ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｗｏｒｋ
ｅｔ ａｌ ＳｅｅｄＳｃｉｅｎｃｅＲｅ￣
ＱｕａｒｔａｃｃｉＭＦꎬ Ｇｌｉｓｉｃ Ｏꎬ Ｓｔｅｖａｎｏｖｉｃ Ｂ .ꎬ ２００２. Ｐｌａｓｍａ ｍｅｍ￣ ｃａｒｒｉｅｄｏｕｔａｔｔｈｅＢｅｉｊｉｎｇＢｏｔａｎｉｃａｌＧａｒｄｅｎ [Ｊ].
ｓｅａｒｃｈ １
ｂｒａｎｅｌｉｐｉｄｓｉｎ ｔｈｅ ｒｅｓｕｒｒｅｃｔｉｏｎ ｐｌａｎｔ Ｒａｍｏｎｄａ ｓｅｒｂｉｃａ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ꎬ (０２):１２７—１３４
